明胶酶谱分析法

2010-03-02 09:33 · winter

一.用品 1.细胞培养或者提取组织 2.试剂的配制 (1)配制10%SDS聚丙烯酰胺凝胶(含1.0mg/ml 明胶) A.分离胶的配制(注:根据你所用的电泳仪胶的大下确定配制胶的量) 10% SDS聚丙烯酰胺凝胶 5ml(包括) ddH2o 1.5ml 30% 储备

一.用品

1.细胞培养或者提取组织

2.试剂的配制

(1)配制10%SDS聚丙烯酰胺凝胶(含1.0mg/ml 明胶)

A.分离胶的配制(注:根据你所用的电泳仪胶的大下确定配制胶的量)

10% SDS聚丙烯酰胺凝胶 5ml(包括)

ddH2o 1.5ml

30% 储备胶 (0.8%BIS+29.2%丙烯酰胺) 1.65ml

1.5mol/l Tris(PH 8.8) 1.25ml

10% SDS 50ul

10%过硫酸铵 50ul

TEMED 4ul

1%明胶 0.5ml

B.浓缩胶的配制

浓缩胶 3ml

ddH2O 2.1ml

30%储备胶 0.5ml

1mol/l Tris-HCL( PH 6.8) 0.38ml

10% SDS 30ul

10%过硫酸铵 30ul

TEMED 3ul

(3)5×Tris –甘氨酸电极缓冲液

0.125mol/l Tris-HCL,1.25mol/l 甘氨酸,0.5%SDS(PH 8.3)

(4)4 ×上样缓冲液

0.32% Tris-HCL 6.4ml

4%SDS(PH7.2) 8ml

16%甘油 3.2 ml

溴酚蓝 0.024g

ddH2o 2.4ml

(5) 洗脱液:2.5% Triton X-100,50mmol/L Tris -HCl ,5mmol/L CaCl2, 1μmol/L ZnCl2,pH7. 6

漂洗液: 50mmol/L Tris -HCl ,5mmol/L CaCl2, 1μmol/L ZnCl2,pH7. 6

(7)孵育液:50mmol/L Tris - HCl , 5mmol/ CaCl2 , 1μmol/L ZnCl2, 0. 02% Brij-35 ,pH7.6

(8)染色液:0.05% Coomassic 亮蓝 R-250,30%甲醇,10%乙酸

(9)脱色液A、B、C:甲醇浓度分别为30%、20%、10 % ,乙酸浓度分别为10 %、10 %、5%

二:步骤

1.取对数期的癌细胞在的无血清培养基DMEM中培养24h。

2.次日收集上清液,将上清液移入离心管中 2000rpm 离心10min,-70℃储存备用。

3.根据细胞计数调整各组细胞培养上清液中的蛋白浓(或者测定蛋白浓度调整使所上蛋白总量一致)。与4×上样缓冲液(4%SDS,0.25 mmol/L Tris-HCl,40%甘油,0.1% 溴酚蓝)按照1∶3混合。

4.配制分离胶和浓缩胶,15ul/孔上样(根据表达强忍和蛋白浓度确定上样量),4℃进行SDS-PAGE 电泳100v恒压跑至分离胶和浓缩胶交界处改为90毫安恒流,直至溴酚蓝跑出胶外。

5.电泳结束后,将凝胶置于洗脱液(2.5% Triton X-100,50mmol/L Tris -HCl ,5mmol/L CaCl2, 1μmol/L ZnCl2,pH7. 6) 中振荡洗脱2次,每次45分钟,然后用漂洗液(除不含Triton X - 100 外其余同洗脱液) 漂洗2次,每次20分钟,接着,将凝胶置于孵育液( 50mmol/L Tris - HCl , 5mmol/ CaCl2 , 1μmol/L ZnCl2, 0. 02% Brij-35 ,pH7.6) 中37℃ 孵育42h。

6.孵育结束后经染色液(0.05% Coomassic 亮蓝、30%甲醇、10%乙酸) 染色3h,及脱色液A、B、C(甲醇浓度分别为30%、20%、10 % ,乙酸浓度分别为10 %、10 %、5%) 分别脱色0.5、1、2h后,显示出MMP-2(72KD) 和MMP -9(92 KD) 为位于蓝色背景上的透亮带,用凝胶图像分析系统分析读取条带面积,宽度和灰度值,做统计分析。

注意事项:

1.制备聚丙烯酰胺时应注意排除气泡 。

2.明胶酶谱的活性受钙离子,锌离子,和PH值等因素的影响,因此缓冲液 配制应严格准确,尽量用超纯水,孵育温度也掌握好。

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