这种方法最早用Richaed Treisman参照Lis的工作而设计。Lis是最早用聚乙二醇（PEG）分离不同大小DNA的人。Treisman法被广泛用于碱裂解法制备的质粒DNA的纯化。首先将粗提质粒DNA用氯化锂处理沉淀大分子RNA，用RNA酶消化污染的小分子RNA。然后用含PEG的高盐溶液沉淀大的质粒DNA，使短的RNA和DNA片段留在上清中。沉淀下来的质粒DNA用酚：氯仿抽提及乙醇沉淀。这里介绍一种改了的Treisman法：用PEG和MgCl2溶液沉淀质粒DNA。
PEG/ MgCl2 沉淀法与用柱层析和CsCl-溴化乙锭平衡离心纯化质粒DNA的主要区别在于：他不能有效分离带缺口的环状质粒和闭合的环状质粒。后两种方法用于纯化易产生缺口的特大质粒（<15kb）和用于生物物理测量的闭合环状质粒是首选。不过，用PEG/ MgCl2 沉淀法纯化的治理不仅可用于所有分子克隆中的酶学反应(包括DNA测序)，还可用于高效转染哺乳动物细胞。
材料
缓冲液和溶液
氯仿乙醇异丙醇LiCl（5mol/L）
PEG- MgCl2 溶液酚：氯仿（1：1，V/V）
乙酸钠（3mol/L,ph5.2）
TE（ph8.0） TE（ph8.0）含20ug/ml Rnase A
核酸和寡核苷酸粗制质粒
离心机和转头
Sorvall-SS34或与其相当的转头
专用设备
冰水浴
易生物仪器库：https://www.ebioe.com/yp/product-list-42.html
易生物试剂库：https://www.ebioe.com/yp/product-list-43.html
方法
1.用3ml粗提质粒转移到15mlCorex管中，在冰浴中冷却至0℃。
2. 加入3ml冰预冷的5mol/L LiCl，混匀，于4℃离心12000g（Sorvall-SS34转头，10000r/min）10min。
3. 转移上清至30ml Corex管中，加等体积异丙醇，混匀，室温离心回收核酸，12000g（Sorvall-SS34转头，10000r/min）10min。
4. 小心倒去上清，导致管口，使液体流干。室温下用70%乙醇洗沉淀和管壁。小心将乙醇倒去，用真空抽吸器将管壁上残留的乙醇抽干。在纸巾上倒置数分钟，使无可见乙醇残留。但应使沉淀保持湿润。
5. 用500ul含Rnase A的TE(PH8.0)溶解湿润的核酸沉淀。将溶液转移到微量离心管，室温放置30min。
6. 将质粒-Rnase混合物用酚：氯仿抽提一次，然后用氯仿抽提一次。
7. 用标准的乙醇沉淀法回收DNA。
8. 将质粒DNA沉淀用1ml灭菌水溶解，再加入0.5ml PEG- MgCl2 溶液。
9. 室温放置超过10min，然后于室温用微量离心机在最大速度离心20min，以回收沉淀的质粒DNA
10.沉淀用0.5ml70%乙醇重悬以去除微量PEG,用微量离心机在最大速度离心5min以回收核酸。
11.吸去乙醇，重复步骤10.第二次洗涤后，在离心管架上放置10-20min，使乙醇挥发。
12.湿润的质粒沉淀用500ulTE（ph8.0）溶解。以1：100用TE（ph8.0）稀释后测OD260并计算质粒DNA的浓度。按1OD260=50ug质粒DNA/ml计算。
关于DNA的吸光度，。
13.分装DNA并保存于-20℃。
