一、植物DNA的提取原理
利用基因组DNA较长的特性，可以将其于细胞器或质粒等小分子DNA分离。当加入一定量的异丙醇或乙醇，基因组的大分子DNA即沉淀形成纤维状絮团漂浮其中，可用玻璃棒将其取出，而小分子DNA则只形成颗粒状沉淀附于壁上及底部，从而达到分离提取的目的。分离基因组DNA应尽量在温和的条件下操作。
二、实验试剂
CTAB 氯仿 乙戊醇 乙醇异丙醇酚NaAcTris碱EDTARnaseA
NaCl等
三、操作步骤
（一）简易提取
1. 在50ml带盖离心管（放在-20度预冷）中加入20ml提取缓冲液I，60℃水浴预热。
2. 水稻幼苗或叶子5~10g，剪碎，在研钵中加液氮磨成粉状后立即倒入预热的离心管中，剧烈摇动混匀，60℃水浴保温30~60分钟（时间长，DNA产量高），不时摇动。
3. 加入20ml氯仿/戊醇/乙醇溶液，颠倒混匀（需带手套，防止损伤皮肤），室温下静止5~10分钟，使水相和有机相分层（必要时可重新混匀）。
4. 室温下5000rpm离心5分钟。
5. 仔细移取上清液至另一50ml离心管，加入一倍体积异丙醇，混匀，室温下放置片刻即出现絮状DNA沉淀。
6. 在1.5ml eppendorf 管中加入1ml TE。用钩状玻璃棒捞出DNA絮团，在干净吸水纸上吸干，转入含TE的离心管中，DNA很快溶解于TE。
7. 如DNA不形成絮状沉淀，则可用5000rpm离心5分钟，再将沉淀移入TE管中。这样收集的沉淀，往往难溶解于TE，可在60℃水浴放置15分钟以上，以帮助溶解。
8. 将DNA溶液3000rpm离心5分钟，上清液倒入干净的5ml离心管。
9. 加入5μlRNaseA（10μg/μl）,37℃ 10分钟，除去RNA（RNA对DNA的操作、分析一般无影响，可省略该步骤）。
10. 加入1/10体积的3mol/L NaAc 及2×体积的冰乙醇，混匀，-20℃放置20分钟左右，使DNA形成絮状沉淀。
11. 用玻璃捞出DNA沉淀，70%乙醇漂洗，再在干净吸水纸上吸干。
12. 将DNA重新溶解于1 ml TE中，－20℃贮存。
（二）微量提取
1. 取2cm新鲜叶片冰冻研钵中，剪碎加1ml 2XCTAB提取液（预热），研磨，转移至1.5ml离心管。
2. 室温下稍离心30秒。
3. 取400μl上清液于新管中，加酚：氯仿：异戊醇（25：24：1）400μl，缓慢颠倒混匀，室温下5000g（rpm）离心20分钟。
4. 取上清，加等体积氯仿：异戊醇（24：1）缓慢颠倒混匀，室温下10000g离心5min.
5. 取上清，加2V无水乙醇，缓慢颠倒混匀。静止3min，13000rpm离心5min.
6. 去上清，加70%乙醇中洗管壁，并静止1min，去乙醇，风干。
7. 用50μl TE重悬DNA。
