法医物证检材多种多样，受外界影响千差万别，从中提取的DNA 量也各不相同。因此，在进行DNA 分析前，对样品提取的DNA 的定量分析是十分必要的。
方法一：分光光度法
【实验原理】
分光光度计采用一个可以产生多个波长的光源，通过系列分光装置，从而产生特定波长的光源，光源透过测试的样品后，部分光源被吸收，计算样品的吸光值，从而转化成样品的浓度。组成DNA 分子的碱基含有共扼双键，具有吸收紫外线的特性，最大吸收值在波长为250-270nm 之间。这些碱基与戊糖，磷酸形成核苷酸后，使DNA 的最大吸收波长是260nm。核酸浓度与其吸光度成正比。通过测定DNA 样品在260nm 的紫外吸收值，以此可以计算出DNA 样品的浓度，也可以用OD260/OD280 的比值检查核酸的纯度。
【实验试剂】
灭菌水
【实验仪器】
紫外分光光度计、比色杯、刻度移液管、玻璃试管
【实验方法】
1.样品准备：吸取5μl DNA 样品移入试管中，加灭菌水（或0.4mol/L NaOH）至1ml混匀后，注入分光光度计的比色杯中待测。
2.样品测定：一支比色杯为空白对照，分别测定另一比色杯加中稀释样品在波长为260nm 和280mn 时的OD 值。
【结果判定】
1.DNA 样品的浓度：每种核酸的分子构成不一，因此其换算系数不同。
双链DNA 浓度= OD260×样品稀释倍数×50/1000。
单链DNA 浓度= OD260×样品稀释倍数×40/1000。
2.DNA 样品的纯度：
OD260/280 比值大于1.8，说明仍存在RNA，可以考虑用RNA 酶处理样品；
OD260/280 比值小于1.6，说明样品中存在蛋白质或酚，应再用酚/氯仿抽提后，以乙醇沉淀纯化DNA。
【注意事项】
1. 测定前应通电20min 使预热。
2. 吸收池的校正：要固定参比杯和样品杯，可在杯的毛玻璃面上写上记号。用盛有参比液的参比杯和样品杯测定吸光度“A0”，样品杯换上样品液后测定的吸光度为“A1”，则校正后的实际吸光度A 为：A= A1－A0 每次操作均需设置对照，在260nm 和280nm 处需校正零点。
3.吸收池使用：①每次检测前后必需将比色杯清洗干净，尤其是盛过蛋白质等溶液，干后形成一层膜，不易洗去，通常杯子不用时可放在 1％洗洁净液中浸泡，去污效果好，使用时用水冲洗干净，要求杯壁不挂水珠，还可以用绸布丝线或软塑料制作一个小刷子清洗杯子。
② 严禁用手指触摸透光面，因指纹不易洗净。严禁用硬纸和布擦拭透光面，只能使用镜头纸和绸布。③ 严禁加热烘烤。急用干的杯子时，可用酒精荡洗后用冷风吹干。决不可用超声波清洗器清洗。
方法二：凝胶电泳法
【实验原理】
DNA 片断可以与溴化乙锭（EB）分子嵌合，这种结合物在紫外灯下显橘红色荧光，其荧光强度与DNA 含量成正比，通过比较样品与系列标准品的荧光强度，可对样品中的DNA进行定量。
【实验试剂】
1．琼脂糖 2.TAB 缓冲液
3.上样缓冲液 4.EB 荧光染色液
【实验仪器】
电泳仪、潜水电泳槽
【操作方法】
1． 凝胶制备
（1）取琼脂糖0.4g，加入20ml 1×TBE 中配制成2%的琼脂糖溶液，加热熔解。
（2）灌制凝胶：将梳子安插在制胶模具上，将温度降至60℃左右的琼脂糖溶液倒入模具中，室温凝固35~40min。轻轻拔去梳子。将模具置于电泳槽中，向电泳槽中加入0.5×TBE电泳缓冲液，没过凝胶约1mm。
2． 加样电泳
（1）将DNA 样品与上样缓冲液按5:1 比例混合后，取5μl 加入凝胶加样槽中。
（2）取一系列浓度不同的标准DNA 样品与指示剂混合后，加入样品槽中。
（3）按5V/cm 的电压进行电泳，根据指示剂泳动的位置判定电泳的距离。
3． 染色显谱
将凝胶小心剥离模具，浸泡在0.5ug/ml 的EB 染液中染色约30min。在紫外灯下观察结果。
【结果判定】
比较样品DNA 与DNA 标准品的荧光强度，计算出待测样品DNA 浓度。
【注意事项】
1.该方法灵敏、快速，适用于微量DNA 浓度测定，但不十分准确。它的强度取决于嵌入碱基的溴化乙锭的多少，而且与DNA 的螺旋程度密切相关，标准品与样品难以完全一致，并且还受其他发光污染物的影响。
2.电泳加样时DNA 取量要准确，否则会造成误差。
3.EB 为强诱变剂，在操作中应特别注意自我保护。
【备注】
1. 指示剂在不同凝胶浓度下相当的DNA 大小
2. 新型荧光燃料GeneFinderTM 具有安全、灵敏等特点，可以作为各种核酸电泳的染色剂。该燃料发射绿光银光，最大发射波长为515nm，可以在紫外凝胶投射仪观测，也可以用可见光凝胶投射仪观测。
